X Международная студенческая научная конференция
«Студенческий научный форум» - 2018
 
     

ДИАГНОСТИКА КРОВЕПАРАЗИТОЗОВ У НЕПРОДУКТИВНЫХ ЖИВОТНЫХ
Крылова Е., Шабдарбаева Г.С.
Текст научной работы размещён без изображений и формул.
Полная версия научной работы доступна в формате PDF


Актуальность. Кровепаразитарные болезни непродуктивных животных (собак, кошек), вызываемые эндоглобулярными паразитами и жгутиковыми простейшими (пироплазмоз, бабезиоз, трипаносомозы) довольно широко распространены в Казахстане и наносят ощутимый экономический и моральный ущерб владельцам животных.

В Казахстане изучению эпизоотологии кровепаразитарных болезней вообще и эпизоотологии кровепаразитозов непродуктивных животных, в частности, посвящены ряд работ, где представлены видовой состав кровепаразитов, их переносчики, эпизоотологические особенности заболеваний с учетом различных климатических условий, экологических факторов регионов республики, особенностей условий содержания этой группы животных.

Так, в Казахстане, в основном, имеются сведения по обнаружению и распространению пироплазм и пироплазмоза у собак. Данные об этом заболевании в РК имеются в научных работах Н.А.Ефремова (1987); М.К.Жантуриева, Б.М.Жантуриева, (1998) [1,2]. Позже ряд исследователей изучали распространение кровепаразитов животных на юго-востоке Казахстана; иксодофауну и особенности эпизоотологии пироплазмоза собак; исследовали иксодид на зараженность кровепаразитами; разработали пути совершенствования диагностики пироплазмоза, его лечение и профилактику: Г.С.Шабдарбаева Г.С., А.И.Балгимбаева (2005; 2006; 2008); Г.С.Шабдарбаева Г.С., А.И.Балгимбаева, А.С.Ибажанова (2009; 2010) [3,4,5,6,7,8]. Кровепаразиты других видов непродуктивных животных практически нигде не освещены.

Кровепаразиты, в частности, пироплазмоз непродуктивных животных до настоящего времени остается проблемой для Алматы и его пригородов и вызывает интерес у исследователей, что приведено в работе А.А.Ибраимовой, Д.М.Хусаинова, Г.С.Шабдарбаевой (2016) [9].

Кровепаразитарные болезни относятся к группе трансмиссивных инвазий, что определяет ряд биологических и эпизоотологических особенностей. Одной из важнейших биологических особенностей этих болезней является длительное, иногда пожизненное, сохранение паразитов в организме переболевших животных. Такие животные являются основным резервуаром инвазии в природе и постоянно заражают членистоногих – переносчиков, в организме которых паразиты выживают относительно недолго. А те, в свою очередь, создают природный неблагополучный очаг и распространяют болезни среди восприимчивых животных.

Отсюда ясны роль и важность своевременной и надежной диагностики кровепаразитозов в комплексе мер борьбы с ними, особенно с учетом того, что на сегодняшний день разработаны достаточно эффективные методы и средства стерилизации организма животных от кровепаразитозов.

Цель исследований. Изучить в сравнительном аспекте различные методы диагностики кровепаразитозов у непродуктивных животных.

Материалы и методы исследований

Работа проводилась в частных ветеринарных клиниках г.Алматы и в лаборатории «Противопаразитарной биотехнологии» кафедры «Биологической безопасности» Казахского национального аграрного университета.

При исследованиях использованы эпизоотологические, клинические, микроскопические, серологические методы диагностики, спленэктомия, ксенодиагностика, метод исследования клещей-переносчиков на инвазированность кровепаразитами и патолого-анатомический метод.

Эпизоотическую ситуацию по пироплазмозу собак, сезонную и возрастную динамику заболеваемости непродуктивных животных кровепаразитами изучали путем анализа ветеринарных отчетностей Департамента ветеринарного надзора г.Алматы и журналов амбулаторного приема ветеринарных клиник «Друг», «У Лукоморья», «Айболит», а также исследованием мазков периферической крови от животных, окрашенных по Романовскому-Гимза.

Для оценки диагностической ценности различных методов диагностики исследовали одних и тех же животных клиническими; микроскопическими; серологическими методами; методом диагностического лечения с применением специфического при пироплазмозе собак препарата; проводили ксенодиагностику (сбор с животных присосавшихся клещей и определение их до вида с целью выявления специфических переносчиков кровепаразитов); проводили исследования по зараженности снятых с больных животных клещей на инвазированность их кровепаразитами. Предварительный прижизненный диагноз в некоторых случаях был подтвержден патоголоанатомическим вскрытием. Патологоанатомическое вскрытие погибших собак производили по общепринятой методике.

На базе ветеринарной клиники «У Лукоморья» изучали изменения клинических и гематологических параметров у спонтанно и экспериментально зараженных пироплазмозом собак. При изучении клинических параметров отмечали общее состояние животного, температурную реакцию, состояние видимых слизистых оболочек, наличие или отсутствие гемоглобинурии.

Мазки крови готовили от температурящих животных на обезжиренных предметных стеклах, высушивали при комнатной температуре, фиксировали 96º этиловом спирте и красили методом Романовского-Гимза, экспозиция – 40 минут. Смывали краску дистиллированной водой, высушивали и просматривали их под иммерсионной системой по линии Меандра на наличие пироплазм, а также для выведения пироплазменного индекса, пироплазменной формулы и лейкоцитарной формулы.

Из гематологических параметров изучали динамику изменений количества гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов. Содержание гемоглобина определяли по методу Сали, подсчет количества эритроцитов и лейкоцитов производили в счетной камере Горяева.

Динамику паразитемии у спонтанно зараженных собак изучали исследованием мазков крови через каждые 3 дня.

Результаты и анализ исследований: В течение 2016-2017 гг. была в сравнительном аспекте изучена диагностическая ценность некоторых методов диагностики кровепаразитозов непродуктивных животных, преимущественно собак.

Для изучения и анализа диагностической ценности различных методов диагностики кровепаразитозов собак нами были подобраны подозрительные в заболевании кровепаразитозами собаки, которых исследовали сразу несколькими методами: клиническими, микроскопическими, серологическими, методом лечебной диагностики, методом ксенодиагностики и методом патологоанатомического вскрытия. Всего в опытах было использовано 28 собак разной породы и разного возраста.

Из клинических методов нами были использованы следующие методы: учет общего состояния и активности животного; учет состояния видимых слизистых оболочек, учет температурной реакции. Все собаки были угнетены, имели плохой аппетит, видимые слизистые оболочки были анемичны, у 13-х животных наблюдалось затрудненное мочеиспускание, моча темного цвета, температура тела была от 38,9° до 40,3°, тип лихорадки постоянный. Всем 28 животным на основании клинических данных был поставлен предположительный диагноз – пироплазмоз.

От тех же самых животных из периферических сосудов были взяты тонкие мазки крови, которые фиксировали 96° спиртом, красили по Романовскому-Гимза (экспозиция 40 мин.) и исследовали под иммерсионной системой микроскопа на наличие внутриэритроцитарных простейших – пироплазм, бабезий.

От тех же самых животных из периферических сосудов были взяты на обезжиренные предметные стекла так называемые «толстые мазки» крови, которые сразу же просматривали на наличие живых двигающихся жгутиковых простейших, паразитирующих в плазме крови.

От тех же опытных животных из яремной вены брали кровь, получали общепринятым методом сыворотку крови и исследовали ее в реакции связывания комплемента (РСК) со специфическим пироплазменным антигеном и компонентами к нему, предоставленными нам Научно-производственным предприятием «Антиген». РСК ставили по общепринятой методике совместно с сотрудниками НПП «Антиген» [10,11,12,13].

Метод диагностического лечения на этих животных проводили по методике, предложенной в книге Н.И.Степановой и др. (1982) и Г.С.Шабдарбаевой [14,15]. Суть его заключается в следующем: опытным животным вводится с лечебной целью специфический против данного кровепаразитоза препарат: отсутствие лечебного эффекта указывает на непироплазмидозную этиологию заболевания и, наоборот, улучшение состояния указывает на правильность предварительного диагноза. Эта методика признана в последнее время хорошим диагностическим тестом при пироплазмидозах (Н.Я.Веселова, 2003) [16]. Мы опытным животным с диагностической целью вводили антипротозойный препарат беренил внутримышечно, в виде 7% раствора в дозе от 0,3 до 0,5 мл на одно животное в зависимости от веса из расчета 3,5 мг ДВ – диминазина на 1 кг массы тела животного.

При случаях гибели животных, проводили патологоанатомическое вскрытие павших собак по общепринятой методике (метод А.В.Жарова, И.В.Иванова, А.П. Стрельникова, 2003). По ходу вскрытия трупов брали так называемые «кляч-препараты», т.е. мазки-отпечатков из паренхиматозных органов (селезенки, печени, легких). Эти препараты фиксировали 96° спиртом, красили по Романовскому-Гимза (экспозиция 40 мин.) и исследовали под иммерсионной системой микроскопа на наличие булавовидных форм кровепаразитов.

При клинических осмотрах проводили индивидуальные сборы клещей с животных, вели их количественный учет и определение до рода и вида при помощи определителей Б.И.Померанцева (1946, 1950), Г.В.Сердюковой (1963), Н.А.Филипповой (1985) [17].

Степень инвазированности иксодовых клещей пироплазмами изучали применением биологической диагностики пироплазмид, в частности, исследованием иксодовых клещей и их органов: слюнных желез, гемолимфы, яиц клещей по методам А.А.Цапруна, И.В.Абрамова, А.А.Цапруна и А.А.Маркова [17], а также с помощью запатентованной нами методики [18].

Для каждого примененного нами диагностического теста рассчитывали индекс его экстенсэффективности (ЭЭ).

В период исследований изучали клинические признаки пироплазмоза. Течение заболевания собак пироплазмозом было разным: острым, хроническим и атипичным (латентным) в зависимости от степени инвазированности, физиологического состояния животных, иммунитета.

В наших исследованиях наблюдали, в основном, острое течение заболевания у собак. Отмечалось повышение температуры тела до 40,0 - 41,0°С, отмеченная температура держалась обычно 2-3 дня, и очень редко 4 дня. Одновременно с лихорадкой у больных животных инвазия проявлялась отсутствием аппетита, угнетением и потерей интереса к окружающей среде, учащением дыхания; отмечалась бледность или желтушность слизистых оболочек ротовой полости, влагалища, препуциального мешка и конъюнктивы, слабость тазовых конечностей, рвота. Моча окрашивалась в красный или красно-коричневый цвет на 4-5 сутки; а к 7-8 дню заболевания (без лечения), температура тела снижалась до 35 - 37°С, нарастала сердечная недостаточность, вплоть до летального исхода.

Хроническое течение болезни наблюдали у 2-х животных с высокой резистентностью организма. Начало заболевания у них протекало, как правило, бессимптомно. Отмечалась вялость, быстрая утомляемость, мышечная слабость и анемия слизистых оболочек собак. Температура тела чаще всего была в пределах физиологической нормы, изредка повышалась до 40,0°С. Периодами наблюдалось покраснение мочи. Животные теряли живую массу. В редких случаях наблюдали расстройства функции желудочно-кишечного тракта.

Однако, в последнее время стали выявлять и атипичное течение заболевания, диагностика в этом случае нередко была затруднена, так как симптомы пироплазмоза появлялись в зимнее время года или ранней весной, то есть тогда, когда резистентность организма собак понижена. При этом отмечалась общая слабость, вялый аппетит, слабость на тазовые конечности, очень редко наблюдалась слабость грудных конечностей, истощение, периодически повторяющаяся рвота. Температура тела, зачастую оставалась в пределах показателей физиологической нормы, моча и стул не имели отклонений от нормы. Как правило, обострялись имеющиеся у животных хронические заболевания, а при наличии ран или других очагов воспаления - процессы заживления протекали крайне медленно. В этом случае диагноз можно было поставить только после проведения гематологических и биохимических исследований крови, а также мазков из периферических сосудов на наличие возбудителя пироплазмоза.

Исследование биохимических показателей и гемостаза крови собак показало, что наибольшее количество пироплазм (10-40% пораженных эритроцитов) в крови наблюдалось на 2-3 день заболевания. На 4 день степень поражения эритроцитов составляла 1-3%. В дальнейшем количество пироплазм постепенно уменьшалось, и на 5-7 день заболевания в мазках крови обнаруживались лишь единичные паразиты.

В разгар болезни кровь становилась водянистой, изменялась и морфология эритроцитов, которые в окрашенном мазке имели мишеневидную форму или «шиловидные отростки» (пойкилоцитоз). На основании анализа полученных биохимических и морфологических показателей крови собак были сделаны следующие выводы: кроме измененной морфологии эритроцитов, у больных животных практически всегда наблюдался низкий уровень гемоглобина и снижение количества эритроцитов, отмечался повышенный цветной показатель и увеличение среднего содержания гемоглобина в одном эритроците. Увеличение среднего содержания гемоглобина в одном эритроците в сочетании с повышением цветного показателя свидетельствовало о развитии гиперхромии. Количество эритроцитов снижалось в некоторых случаях до 2,5 - 3,0 х1012/л, а количество гемоглобина до 35-40 г/л.

В острых случаях течения пироплазмоза отмечался небольшой (до 14-16x109/л) лейкоцитоз. Причем в первые дни болезни наблюдалось кратковременное преобладание эозинофилов, которые затем уступали место нейтрофилам, а в дальнейшем регистрировался лимфоцитоз.

Снижение общего количества лейкоцитов (лейкоцитопения) наблюдалась у животных с хроническим течением заболевания. Данный факт происходил за счет снижения уровня нейтрофилов. В то же время существенных изменений в других клетках нами не отмечалось (таблица 1).

Как ранее уже упоминалось, у животных с острым течением заболевания, наоборот, отмечалось повышение общего количества лейкоцитов. При анализе лейкограммы у этих животных было выявлено достоверное увеличение количества эозинофилов (в 1,5 раза), юных (в 2 раза) и палочкоядерных (в 4- 5 раз) нейтрофилов.

Таблица 1 - Клинико-гематологические показатели при пироплазмозе собак

Показатели

Дни исследований:

3

6

9

12

15

18

21

24

27

Температура

тела ºС

38,7

38,9

40,1

40,3

40,4

39,8

39,6

39,1

38,9

Гемоглобин г/л

45,2

42,1

40,3

32,7

31,9

30,9

30,9

30,9

30,9

Эритроциты млн/куб.мм

6,2

5,9

5,7

4,2

2,5

4,5

4,6

4,6

4,7

Лейкоциты

тыс/куб.мм

8,0

8,3

8,5

8,9

9,1

14,1

12,2

9,2

9,4

У животных с хроническим течением заболевания общее количество лейкоцитов незначительно понижалось (в среднем 0,6 раза), имело место незначительное изменение в лейкограмме крови: присутствовали в небольшом количестве юные нейтрофилы (0,6-1,2%) и наблюдалось увеличение палочкоядерных (до 22%).

Температурная реакция у спонтанно и экспериментально зараженных животных характерна подъемом до максимальных показателей до 41,5 – 42,0 градусов.

Отмечена гибель 3-х опытных животных при паразитемии больше 70%.

Таким образом, на основании проведенных клинических исследований установлена сильная температурная и паразитарная реакции, резкое снижение количества эритроцитов и гемоглобина и увеличение числа лейкоцитов у зараженных пироплазмозом собак. Всем исследованным животным выставлен предварительный диагноз – пироплазмоз.

От всех животных исследованы тонкие и толстые мазки крови, сыворотка крови в РСК, применена лечебная диагностика, всем проведена ксенодиагностика с целью подтверждения или отрицания предварительного клинического диагноза и с целью изучения диагностической ценности разных методов диагностики.

Для подтверждения предварительного клинического диагноза проводили микроскопическое исследование тонких и толстых мазков крови из периферических сосудов. От каждой собаки брали по два мазка из периферических сосудов. Мазки брали на обезжиренные предметные стекла, высушивали их на воздухе, фиксировали в течение 5 – 7 минут 96º-ным этиловым, метиловым спиртом, либо спиртом с эфиром пополам. Мазки окрашивали по методу Романовского-Гимза, экспозиция 40 минут и исследовали их под иммерсионной системой микроскопа с использованием кедрового масла по линии Меандра с просмотром не менее 200 полей зрения микроскопа (п.з. микроскопа).

Микроскопирование приготовленных мазков крови проводили с помощью тринокулярного микроскопа с компьютером KARL ZEISS с фотографированием наиболее характерных мазков и форм паразитов (рисунки 1,2,3).

   

Рисунок 1 – Исследование тонких мазков крови и идентификация кровепаразитов с помощью тринокулярного микроскопа с компьютером KARL ZEISS

Рисунок 2 – Кровепаразиты Piroplasma canis внутри эритроцита пр исследовании тонкого мазка крови, окрашенного по Романовскому-Гимза

   

Рисунок 3 - Piroplasma canis в тонком мазке крови, окрашенном по Романовскому-Гимза, ИИ до 10-23 в 1 п.з. микроскопа

Рисунок 4 – Бабезии внутри эритроцитов

При исследовании тонких мазков крови обнаруживали внутриклеточных простейших Piroplasma canis, для которых характерны крупные (длина больше радиуса эритроцита), парные грушевидные формы, соединенные своими тонкими концами под острым углом и центральное положение внутри эритроцитов. Пораженность эритроцитов (ИИ, экз.) составляет около 24-31%.

Встречались единичные бабезии, для которых характерны мелкие размеры (длина паразита меньше радиуса эритроцита); соединение парных форм паразитов под тупым углом больше 90 градусов; расположение внутри эритроцита – периферическое, как бы в форме «наездника» (рисунок 4).

   

Рисунок 5 – Жгутиковые простейшие Trypanosomaevansi в плазме крови собак

Рисунок 6 – Постановка РСК с пироплазменным антигеном НПП «Антиген»

На исследование жгутиковых простейших «толстые мазки» крови без обработки просматривали в слегка затемненном поле микроскопа на наличие двигающихся паразитов.

При исследовании «толстых мазков» крови в 2-х случаях из 28 или в 7,1% в плазме крови были обнаружены трипаносомы вида Trypanosomaevansi, для которого характерна удлиненная, буравовидная форма, наличие ядра, кинетопласта, жгутика, ундулирующей мембраны (рисунок 5).

Кроме того, отмечали морфологические изменения форменных элементов крови (эритроцитов) при кровепаразитозах, которые проявлялись в виде резкого снижения числа эритроцитов, анизоцитоза, пойклоцитоза (рисунки 2,3,4,5,).

Серологические исследования проводили с использованием пироплазменного антигена, предоставленного НПП «Антиген» совместно с сотрудниками этого учреждения (рисунок 6).

Очень важным и информативным при сомнительных случаях является метод спленэктомии – метод удаления иммунокомпентного органа (селезенки) для провоцирования острого течения болезни и появления в периферической крови большого количества кровепаразитов. Это метод дополнительной диагностик кровепаразитозов был предложен Н.И.Степановой с соавторами (1982) и далее успешно применялся многими исследователями в спорных случаях при затруднении постановки диагноза. Суть метода заключается в том, что при оперативном удалении селезенки для зараженных эритроцитов нет места, где бы происходило их разрушение и в крови начинает циркулировать значительно большее количество пораженных эритроцитов, что легко обнаруживается при микроскопии тонких мазков. Нами проводилась по разрешению владельцев спленэктомия 2-х собак. Результаты отражены в таблице 1.

Метод лечебной диагностики также широко применяется в ветеринарной практике. Мы давали подозрительным в заболевании пироплазмозом собакам специфический препарат Беренил. Препарат вводился в виде 7 %-ного водного раствора в дозе 3,5 мг/ кг внутримышечно, с внутренней поверхности бедра, двукратно с интервалом 24 часа. У большинства животных (у 7 голов, т.е. у 58,33 %) наблюдалось улучшение состояния через сутки после первой инъекции, а у 2 собак или у 16,67 % улучшение наступало на вторые сутки и у 1 больной, т.е. у 8,33 %, видимый результат был достигнут только на 3 сутки после первой инъекции беренила, а полное выздоровление наступало на 7-10 сутки. Из общего количества собак, подвергнутых лечебной диагностике 3 собаки или 16,67% погибло. Значит, в случае улучшения состояния подозреваемых в заболевании собак при применении специфического препарата – беренила, диагноз на кровепаразитоз подтверждался. Одновременно произведена и лечебная манипуляция с положительным эффектом.

Исследования по ксенодиагностике. Для уточнения эпизоотической ситуации по кровепаразитам непродуктивных животных важное значение имеет наличие и видовой состав их переносчиков в регионе, а также степень инвазированности клещей кровепаразитами. Являясь косвенным методом диагностики, ксенодиагностика дает важное дополнение при изучении эпизоотической ситуации по кровепаразитозам и при мониторинге природных очагов и биотопов кровепаразитарных болезней.

Для уточнения переносчиков пироплазмоза, преобладающего вида переносчиков изучали видовой состав членистоногих, снятых с собак при проведении исследований. Часть клещей фиксировали 70% спиртом и определяли их до рода и вида при помощи определителей Б.И.Померанцева (1946, 1950), Г.В.Сердюковой (1963), Н.А.Филипповой (1985) [19]. В наших исследованиях преобладающим видом клещей и основным переносчиком кровепаразитов является клещ вида Dermacentormarginatus (рисунок 7).

Часть снятых клещей, особенно хорошо упитанных самок, помещали в чашки Петри на слегка увлажненный фильтровальный лист и давали возможность для откладки ими яиц (рисунки 7,8).

Степень зараженности собранных иксодовых клещей пироплазмами изучали применением биологической диагностики пироплазмид, в частности, исследованием иксодовых клещей и их органов: слюнных желез, гемолимфы, а также отложенных яиц клещей по методам А.А.Цапруна, И.В.Абрамова, А.А.Цапруна и А.А.Маркова [13].

   

Рисунок 7 - Клещи вида Dermacentor marginatus в сборах

Рисунок 8 – Процесс откладки яиц самками клещей при культивировании

Клещ аккуратно вскрывается. Препаровальными иглами извлекают слюнные железы клеща, разрушают их, делают из них мазки, фиксируют 96º-ным этиловым, метиловым спиртом, либо спиртом с эфиром пополам, красят по Романовскому-Гимза (экспозиция 40-50 мин.). Просматривают мазки под иммерсионной системой микроскопа на наличие булавовидных форм кровепаразитов. Гемолимфу получали, отрезая переднюю конечность клеща и делая мазок из капли гемолимфы, выделившейся из культи, фиксировали и окрашивали методом Романовского-Гимза. Из отложенных самками клещей яиц готовили мазки, окрашивали их методом Романовского-Гимза, фиксировали и окрашивали по Романовскому-Гимза. Обнаружение булавовидных форм кровепаразитов дает право ставить положительный диагноз. В наших исследованиях в клещах, снятых с 13 животных, были обнаружены кровепаразиты, что составило 46,4% (таблица 1).

Результаты исследований диагностической ценности использованных в сравнительном аспекте методов диагностики приведены в таблице 1.

Таблица 1 - Диагностическая ценность методов диагностики пироплазмоза собак

Метод исследования

Количество

исследованных

собак

Результаты исследования

Положительный

результат

Экстенсэффективность метода, ЭЭ, %

1. Клинический

28

28

100,0

2. Микроскопический

28

25

89,3

3. Серологический

28

26

92,8

3. Лечебная диагностика

10

9

90,0

4. Спленэктомия

2

2

100,0

5. Ксенодиагностика

28

13

46,4

6. Инвазированность клещей

28

13

46,4

7. Патологоанатомическое

вскрытие

3

3

100,0

Из таблицы 1 видно, что предположительный клинический диагноз на пироплазмоз, выставленный, по казалось бы, характерным клиническим признакам болезни, микроскопическим методом был подтвержден в 89,3%. Серологическим методом подтвержден на 92,8%. Методом лечебной диагностики при пробном применении специфического препарата против кровепаразитов подтвержден на 90,0%. Применением спленэктомии у 2-х исследованных собак у обоих диагноз был подтвержден на основании резкого увеличения числа пораженных эритроцитов, циркулирующих в периферической крови.

Патологоанатомическим исследованием с взятием и исследованием мазков-отпечатков из паренхиматозных органов прижизненный диагноз был подтвержден на 100,0%.

   

Рисунок 9 - Желтушность слизистых оболочек ротовой полости

Рисунок 10 - Желтушность склеры глаз при пироплазмозе

   

Рисунок 11 - Массовые точечные кровоизлияния на миокарде при пироплазмозе собак

Рисунок 12 - Выраженная спленмегалия при пироплазмозе собак

Отмечена сильная желтушность трупов, желтушность видимых слизистых оболочек и внутренних органов. Отмечены массовые полосчатые и разлитые кровоизлияния во внутренних органах (петехии). Отмечена ярко выраженная спленмегалия – увеличение селезенки примерно в 2-2.5 раза, что является самым характерным признаком кровепаразитоза (рисунки 9,10,11,12).

Метод ксенодиагностики с последующим исследованием клещей на инвазированность кровепаразитами показал экстенсэффективность равную 46,4%.

Следовательно, диагностическая ценность серологического метода и метода диагностического лечения методов в наших исследованиях превысила традиционный микроскопический метод, в среднем на 3%, а спленэктомия и патологоанатомическая диагностика подтвердила прижизненный клинический диагноз на 100,0%.

Заключение. Таким образом, для установления точного диагноза рекомендуется комплексное исследование животных клиническими, микроскопическими и серологическими методами. Для дополнительных исследований, особенно в спорных случаях, при возникновении судебных разбирательств, рекомендуем проводить лечебную диагностику, ксенодиагностику. В случае гибели животного проводить обязательное патолого-анатомическое вскрытие с оформлением протокола во избежание негативных последствий.

_______________________

  1. Ефремов Н.А. Пероральное заражение собак//Современные проблемы протозоологии: Тезисы докл. и сообщений 4-го съезда Всесоюзного общества протозоологов. Л., 1987.

  2. Жантуриев М.К., Жантуриев Б.М. Новые пироплазмиды фауны Казахстана // Вестник с/х науки Казахстана. –1998- № 6.

  3. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Получение паразитарной массы из крови, инвазированной Piroplasma canis для приготовления пироплазменного антигена//Матер. междунар. научно-практич. конф. «Современное состояние и актуальные проблемы развития ветеринарной науки и практики», посвященной 100-летию КазНИВИ. Т.2., Алматы, 2005.

  4. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. К распространению кровепаразитов животных на юго-востоке Казахстана//ж. «Вестник КазНУ им. Аль-Фараби». Серия биологическая, 2006, № 2. С. 49 - 53.

  5. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Иксодофауна и особенности эпизоотологии пироплазмоза собак на юго-востоке Казахстана//Материалы научно-практической конференции «Инновации в аграрном секторе Казахстана», посвященной 75-летию профессора К.С.Сабденова. Алматы, 2008. С. 575-581.

  6. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Иксодофауна и исследования по зараженности иксодид кровепаразитами//Материалы международной научно-практической конференции «Высшая школа и аграрная наука – сельскому хозяйству», посвященной 100-летию со дня рождения Садыкова Б.Х., 90-летию Федосеева В.С., 75-летию Абдильманова У.А., г.Семей, 2009. С. 203-208.

  7. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И., Ибажанова А.С. Диагностика пироплазмоза собак, пути совершенствования//Сборник статей (часть 4) ІV Международной научной конференции «Инновационное развитие и востребованность науки в современном Казахстане», естественно-технические наук. Фонд Президента Республики Казахстан, Совет молодых ученых. ИД «Жибек жолы», Алматы, 2010. С. 228-232.

  8. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И., Ибажанова А.С. Пироплазмоз собак, его лечение и профилактика//Сборник статей (часть 4) ІV Международной научной конференции «Инновационное развитие и востребованность науки в современном Казахстане», естественно-технические наук. Фонд Президента Республики Казахстан, Совет молодых ученых. ИД «Жибек жолы», Алматы, 2010. С. 233-237.

  9. Ибраимова А.А., Хусаинов Д.М., Шабдарбаева Г.С. – Пироплазмоз (бабезиоз) собак в г.Алматы//St. Grigol Peradze Tbilisi Teaching University. Scientific Works IV. Materiales of International Scientific and Practical Conference «Georgia and Modern World-Challenges, Achievements, Progress». Tbilisi, November 25-26, 2016. P. 310-317.

  10. Предварительный патент №17196 - Способ получения антигена из пироплазмид//Опубликовано в официальном бюллетене РК «Промышленная собственность», 2006, № 4 (Авторы: Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И.).

  11. Предварительный патент №17203 - Способ получения антипироплазменной сыворотки// Опубликовано в официальном бюллетене РК «Промышленная собственность», 2006, № 4 (Авторы: Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И.).

  12. Предварительный патент №17204 - Способ получения антипироплазменного гамма-глобулина// Опубликовано в официальном бюллетене РК «Промышленная собственность», 2006, № 4 (Авторы: Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И.).

  13. Предварительный патент №17722 - Способ получения пироплазменного диагностикума// Опубликовано в официальном бюллетене РК «Промышленная собственность», 2006, № 9 (Авторы: Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И.).

  14. Степанова Н.И. и др. Протозойные болезни сельскохозяйственных животных. М., «Колос», 1982.

  15. Шабдарбаева Г.С. Кровепаразитарные болезни животных (эпизоотология, диагностика)// Монография. Алматы, «S-Принт», 2012, 272 с.

  16. Веселова Н.Я., Солопов Н.В. Влияние возраста и породных качеств на распространение пироплазмоза собак в г.Кургане//Научное обеспечение АПК Сибири, Монголии, Казахстана, Белоруси и Башкортостана: Матер. 5-ой Междунар. научно-практич. конф. Абакан-Новосибирск: СО РАСХН. 2002, с. 381-382.

  17. Шабдарбаева Г.С., Балгимбаева А.И. Иксодофауна и исследования по зараженности иксодид кровепаразитами//Материалы международной научно-практической конференции «Высшая школа и аграрная наука – сельскому хозяйству», посвященной 100-летию со дня рождения Садыкова Б.Х., 90-летию Федосеева В.С., 75-летию Абдильманова У.А., 21-24 мая 2009. Семей, 2009. С. 203-208.

18. Патент №31736 - Способ выявления инвазированности клещей тейлериями// Опубликовано в официальном бюллетене РК «Промышленная собственность» №18 от 30.12.2016 г. (Шабдарбаева Г.С., Ахметсадыков Н.Н., Турганбаева Г.Е., Хусаинов Д.М., Балгимбаева А.И., Асылханов Д.У., Ахметжанова М.Н.).