IX Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум - 2017

Нормофлора кишечника участвует во многих жизненно важных процессах макроорганизма, который в свою очередь является для нее средой обитания.

Состояние биоценоза кишечника имеет важнейшее физиологическое значение для жизнедеятельности организма. Обладая высоким сродством к рецепторам энтероцитов и прикрепляясь к ним, представители нормофлоры тем самым уменьшают потенциал патогенного воздействия на стенку кишечника со стороны патогенных микроорганизмов. Помимо этого, нормофлора, вызывая антигенное раздражение слизистой оболочки кишечника, потенцирует включение механизмов неспецифической резистентности, системного и местного иммунитета: увеличение синтеза иммуноглобулинов, пропердина, комплемента, лизоцима. Ассоциативные связи между энтероцитами и микробными колониями нормофлоры приводят к формированию на поверхности интестинальных слизистых оболочек защитного биослоя, «уплотняющего» стенку кишечника и препятствующего проникновению в кровоток токсинов инфекционных агентов.

Защитная функция нормофлоры кишечника является одной из основных, так как бактерии-симбионты обладают выраженной антагонистической активностью по отношению к патогенным и условно-патогенным микроорганизмам. Доказано участие нормофлоры в обменных процессах организма, а также в формировании иммунобиологической реактивности организма. В результате антигенной стимуляции нормофлорой иммунной системы в организме человека создается и поддерживается общий пул иммуноглобулинов.

Нормофлора пищеварительного тракта играет важную роль в защите организма от токсических воздействий экзогенных и эндогенных субстратов и метаболитов. Она защищает макроорганизм от токсичных соединений, не только поступающих в организм с пищей, водой, воздухом, но и образующихся внутри него. Это первое звено в каскаде защитных реакций организма на повреждающие воздействия.

Целью нашего исследования являлось выделение и идентификация представителей нормофлоры кишечника лабораторных крыс.

Для решения поставленной цели нами использовались следующие методы:

1. Метод выделения чистой культуры чашечным методом. Принцип метода заключается в получении чистой культуры из отдельной колонии, которую считают результатом развития одной клетки. Предварительно содержимое толстого кишечника растворяли в стерильном физиологическом растворе и производили посев на 1,5 % мясопептонный агар (МПА) бактериологической петлей методом истончающего штриха на 4 сектора. Чашку Петри на 24 часа помещали в термостат при T = 37 C. При выделении чистых культур учитывались морфологические признаки колоний, растущих изолированно. Затем производили пересевы бактерий из отдельных колоний на другие чашки Петри со стерильно залитым МПА с последующим инкубированием в течение суток при температуре 37 С. Пересевы делали до тех пор, пока на чашках отдельно не росли морфологически различные культуры.

2. Идентификация чистой культуры на основании морфологических, тинкториальных, макрокультуральных и биохимических свойств микроорганизмов (для определения биохимических свойств использовали коммерческие тест-системы фирмы BioMerieux – Франция а также использовался пестрый ряд Гисса основанный на способности разлагать различные углеводы с образованием кислоты или кислоты и газа).

Выводы: В ходе проведенных исследований нами были выделены и идентифицированы следующие представители нормофлоры кишечника лабораторных крыс: Enterococcus faecium, Escherichia coli, Lactobacillus acidophilus.

Код для цитирования: Скопировать